伯樂(Bio-Rad)Gene Pulser Xcell 電穿孔儀是一種高精度、高穩定性的基因導入設備,通過短暫高壓脈沖使細胞膜產生可逆性微孔,從而實現DNA、RNA、蛋白質等大分子的導入。該儀器被廣泛應用于分子克隆、基因編輯、疫苗研發以及細胞功能研究等領域。
在正式開展實驗之前,充分的準備是確保實驗成功的關鍵環節。實驗準備包括設備檢查、參數設定、試劑與樣品的處理、操作環境控制以及安全防護等內容。規范、系統的實驗準備不僅能減少實驗風險,還能提高轉化效率和重復性。
電穿孔實驗屬于高能量瞬時放電操作,對操作環境、試劑純度及人員技能要求較高。整體準備應遵循以下原則:
確保安全:所有高壓設備應接地良好,操作人員應經過培訓;
確保清潔:實驗環境需無塵、無鹽霧、無雜質,以防電弧;
確保精確:所有試劑與細胞樣品應按標準化流程制備;
確保一致性:每一步操作需嚴格執行既定時間與溫度條件。
在使用 Gene Pulser Xcell 電穿孔儀前,應對設備進行全面外觀檢查:
儀器外殼無裂痕、無灰塵、無液體滲入;
電源線及接地線完好;
前端電極插口無氧化或鹽分殘留;
電穿孔杯接口清潔、無導電液殘留;
顯示屏與按鍵響應靈敏,無死機現象;
Pulse Controller 模塊連接牢固,無松動。
任何異常必須在開機前排除,禁止帶故障運行。
電穿孔儀需使用220V±10%的穩壓電源供電。
確認電源插座具備接地端,且接地電阻小于4Ω;
禁止使用延長線或非原廠電纜;
建議安裝獨立穩壓器或UPS電源,以防瞬時電壓波動。
開機后系統會自動進入自檢狀態,檢測內部電容、電阻模塊、傳感電路及溫度傳感器。
自檢成功后屏幕顯示“Ready”;
若出現“Error”提示,應參閱儀器說明書或聯系廠家服務中心處理;
自檢通過后方可進行參數設定。
電穿孔杯是實驗中與樣品直接接觸的關鍵部件。其質量與清潔度直接決定電場分布的均勻性。
根據實驗對象選擇不同間隙的杯體:
0.1 cm 間隙:適用于小體積細菌或小顆粒細胞;
0.2 cm 間隙:常用于大腸桿菌與酵母;
0.4 cm 間隙:用于動物細胞與植物原生質體。
使用前后需徹底清潔:
以無離子水沖洗3次,70%乙醇浸泡10分鐘后晾干;
不得使用強酸、強堿或金屬刷清洗,以免損壞電極;
干燥后置于無塵盒中保存,避免灰塵和水汽。
包括連接電纜、轉化管、移液槍、微量離心管等均需潔凈、無鹽分污染。
電穿孔實驗要求細胞電阻低且細胞膜易受電場作用,因此需提前制備高質量感受態細胞。
以大腸桿菌為例:
從單克隆菌落接種入5 mL LB液體培養基,37℃、200 rpm振蕩培養過夜;
次日1:100比例接種至新鮮LB培養基中;
當OD600≈0.5時迅速放入冰上冷卻;
4℃、4000 rpm離心10 min,棄上清;
用預冷10%甘油溶液洗滌3次;
最終重懸于適量甘油溶液中,濃度約2×10? cells/mL;
分裝于無菌管中備用,可低溫保存。
若為真核細胞(如CHO、HEK293),需提前24小時培養至70–80%融合度,并使用胰酶消化后洗滌兩次,懸浮于無Ca2?、無Mg2? PBS中。
電穿孔對樣品純度要求極高,質粒必須完全脫鹽。
使用高純度提取試劑盒或柱式純化法獲得DNA;
測定濃度保持在50–100 ng/μL;
避免使用含Tris或EDTA的緩沖液,可改用無離子水溶解;
質粒溶液應澄清透明,無沉淀。
用于電擊后細胞修復的培養基建議使用SOC或特制復蘇液,確保pH 7.0–7.2。
SOC組成:胰蛋白胨2%、酵母提取物0.5%、NaCl 10 mM、KCl 2.5 mM、MgCl? 10 mM、葡萄糖20 mM;
使用前預熱至37℃。
實驗區應分為“準備區”“電擊區”和“培養區”:
準備區:用于試劑混合與細胞處理,應在超凈工作臺內操作;
電擊區:安放電穿孔儀及冰浴裝置,遠離易燃材料;
培養區:用于電擊后復蘇及平板培養,保持恒溫。
電擊操作建議在4℃條件下進行,可減少細胞死亡率;
電擊前電穿孔杯應預冷至少10分鐘;
復蘇培養需維持37℃恒溫。
實驗室相對濕度應控制在40–60%;
使用防靜電臺墊,操作人員佩戴接地手環,以避免高壓放電偏移。
人員要求:操作人員需熟悉電穿孔原理、儀器結構及安全規范;
防護措施:穿防靜電實驗服,佩戴絕緣手套、護目鏡;
安全意識:在高壓電源接通前嚴禁接觸電極;
記錄習慣:實驗前應準備好記錄表格,包括參數、樣品批次、時間及溫度。
根據實驗目標設定以下參數:
電壓(Voltage):決定電場強度;
電容(Capacitance):決定脈沖持續時間;
電阻(Resistance):控制能量釋放速度;
時間常數(Time Constant):反映放電特性。
常用設定舉例(大腸桿菌):
間隙:0.2 cm;
電壓:2.5 kV;
電容:25 μF;
電阻:200 Ω;
時間常數:約4.5 ms。
連接空電穿孔杯,設定電壓200 V進行試放電;
檢查波形是否平穩,是否出現電弧聲;
確認顯示的時間常數與理論值一致;
若異常,立即停止并檢查連接。
樣品混合
取40 μL 感受態細胞加入到預冷電穿孔杯中;
加入1–2 μL質粒DNA混勻;
保持液面平整,避免氣泡。
電擊前準備
確認儀器處于“Ready”狀態;
設置參數并記錄;
電穿孔杯放置于儀器電極槽中并蓋上安全蓋。
電擊與復蘇
啟動放電,放電時間約為4–5 ms;
放電結束后立即加入1 mL預溫SOC;
將樣品移至無菌管中,在37℃搖床上復蘇1小時。
后續培養準備
涂布至含抗生素的LB平板;
37℃培養過夜;
次日統計菌落并計算轉化效率。
所有操作須在低溫條件下進行,防止細胞受熱;
質粒與細胞混合后應立即電擊,避免長時間停留;
禁止使用含鹽緩沖液,以防電弧放電;
電擊后立即補加復蘇液;
每次使用后清洗電穿孔杯,確保下次使用安全;
若發現儀器異常聲響或顯示錯誤,應立刻斷電檢查。
電穿孔實驗屬于高壓操作,必須遵守以下安全準則:
實驗區禁止存放易燃溶劑;
操作臺保持干燥;
不得拆卸電源模塊;
儀器維護由廠家專業人員完成;
操作過程中雙手遠離電極區域。
在每次實驗準備階段,應填寫《設備使用與準備記錄表》,內容包括:
日期與操作者;
設備編號與狀態;
設定參數;
樣品類型與批次;
試劑批號與保存條件;
備注與異常記錄。
記錄表應歸檔保存,以便數據追溯與質量管理審查。
長沙實了個驗儀器制造有限公司 為伯樂 Gene Pulser Xcell 系列儀器的技術支持與售后保障單位,提供以下服務:
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質保3年只換不修,確保使用無憂;
定期系統校正與維護;
軟件升級與參數優化支持;
備件更換與原廠耗材供應。
通過廠家專業保障,實驗室可長期保持儀器性能穩定,避免因設備誤差影響科研數據。
實驗準備是電穿孔成功的基礎環節。通過科學的設備檢查、合理的樣品處理、精確的參數設定與嚴格的安全管理,可以顯著提升實驗成功率與數據穩定性。
在整個準備階段,應做到:
儀器性能完好、參數校準精確;
樣品純度高、無鹽污染;
實驗環境潔凈、安全;
操作規范、記錄完整。
伯樂 Gene Pulser Xcell 電穿孔儀以其精準控制、可重復性強的優勢,已成為各類轉化實驗的首選設備。在長沙實了個驗儀器制造有限公司的技術支持與三年質保承諾下,用戶可放心進行高水平的基因導入實驗。
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