質保3年只換不修,廠家長沙實了個驗儀器制造有限公司。
本文將針對《伯樂電穿孔1652660用戶手冊》進行詳盡介紹,涵蓋產品概況、系統組成、技術參數、操作流程、細胞準備、典型實驗流程、安全注意事項、維護保養、常見故障及排查、優化建議等多方面內容,力求全面、通俗、條理清晰,無重復文案。
“伯樂電穿孔1652660”是指型號為 165-2660 的 Bio?Rad (伯樂)“Gene Pulser Xcell Total System”電穿孔儀。該系統為科研實驗室提供“原核與真核細胞通用”的電穿孔(electroporation)工具,其主要功能是通過短暫高電壓電脈沖,在細胞膜上形成可逆性通道,使外源分子(如 DNA、RNA、蛋白質或染料)進入細胞內。根據官網資料,該型號輸出電壓范圍可達 10–3 000 V,支持指數衰變波與方波兩種模式。
該系統為模塊化設計,包含主機、CE 模塊(電容擴展器)、PC 模塊(脈沖控制器)、ShockPod 電擊杯室及電穿孔比色杯。用戶界面友好,內置預設程序,并支持手動編輯。
適用范圍廣泛,從細菌、酵母菌、植系原生質體到哺乳動物細胞皆可。其優勢在于高靈活性、高重復性、便于調參、實驗方案豐富。官網也強調:“Universal electroporator capable of transfecting all cell types”這一特性。
系統包含以下主要部分:
主機控制單元:包括 LCD 顯示屏、按鍵輸入(字母數字鍵與功能鍵)、菜單界面,負責程序選擇、參數設定、脈沖觸發、結果顯示。
CE 模塊(Capacitance Extender):用于提供大電容范圍(25–3,275 μF)以適應低阻抗樣本的指數衰變或方波模式。適合真核細胞或低電阻條件。
PC 模塊(Pulse Controller):用于控制并聯電阻(50–1,000 Ω)以適應高阻抗樣本、微生物等環境,優化指數衰變波時的時間常數。
ShockPod 電擊杯室:樣品插入用電擊杯(cuvette)位于其中,操作便捷、安全性高。
電穿孔比色杯(cuvettes):配備不同間隙規格(如 0.1 cm、0.2 cm、0.4 cm)以適配不同體積、不同細胞類型的電轉化實驗。
電源適配器與安全保險裝置:適配 100–240 V, 50/60 Hz 電源輸入,確保設備全球通用。
系統包裝中,該型號165-2660包括主單元、CE 模塊、PC 模塊、ShockPod、電穿孔比色杯(共15個:5個0.1 cm間隙、5個0.2 cm、5個0.4 cm)及配套附件。
在《用戶手冊》中,技術指標為用戶正確操作、參數設定與實驗優化提供依據。以下列出該系統主要技術參數(摘選整理):
波型(Waveform):指數衰變 (exponential decay) 或 方波 (square wave) 兩種。
輸出電壓范圍:10 V 至 3,000 V。
在10–500 V區間:電容可選25–3,275 μF(以25 μF為增量);在500–3,000 V區間:電容為10、25、50 μF。
并聯電阻(應用于 PC 模塊場景):50–1,000 Ω,以50 Ω為增量;加上無限大作為開路情況下參照。
樣品電阻最低標準:在10–2,500 V時最低20 Ω;在2,500–3,000 V時最低600 Ω。
方波時序參數:10–500 V 時,脈沖持續 0.05–10 ms(以0.05 ms增量);10–100 ms脈沖以1 ms增量;1–10脈沖;間隔0.1–10 秒。500–3,000 V時,脈沖持續0.05–5 ms,以0.05 ms增量;1–2脈沖;最小間隔5 秒。
輸入電源:100–240 V,50/60 Hz。最大功率約240 W(短時間充電時峰值)。
工作溫度:0–35 °C,濕度0–95%(無冷凝)。
尺寸與重量參考:主機:約31 × 30 × 14 cm,CE模塊:31 × 28 × 9 cm,PC模塊:31 × 28 × 5 cm;主機凈重約6.6 kg,CE模塊3.1 kg,PC模塊1.9 kg。
這些參數為用戶在實際操作中設定電壓、電容、電阻、脈沖時間提供標準依據,同時在選杯、選緩沖液、設定樣品條件、評估實驗結果時起到參考作用。
操作流程可分為開機準備、參數設定、樣品插入、觸發脈沖、后處理幾個階段。以下為分步驟指導:
將儀器連接到符合規格(100–240 V, 50/60 Hz)電源,打開主機電源。
檢查設備是否工作正常:LCD 顯示正常、按鍵響應、模塊連接穩固。
確保 CE 模塊、PC 模塊(如使用)已正確安裝,與主機連接牢固。參考手冊第 2 章連接說明。
插入電穿孔比色杯插槽,檢查是否干燥、無殘液、無氣泡。
確保操作環境干凈、無導電液體泄漏、使用絕緣手套與護目鏡。
在主機界面選擇操作模式:可選擇“預設程序”或“手動模式”。預設程序中包含常見細胞類型(細菌、酵母、哺乳動物細胞)對應的電轉參數。
若使用手動模式:輸入電壓值(如 1,200 V)、選擇或調整電容值或時間常數、設定脈沖數、脈沖間隔時間等。手冊中詳細說明如何切換參數。
根據樣品的導電性、體積、杯隙大小(0.1 cm、0.2 cm、0.4 cm)等選擇合適參數。較低阻抗/大體積樣品可使用較大電容或方波模式,較高阻抗/細胞體積小則可借助 PC 模塊并聯電阻設定。
確認所有參數無誤后,將插入比色杯,并關閉 ShockPod 蓋子以確保安全。
系統自檢后可顯示“Ready”或類似提示,此時可準備觸發脈沖。
將含細胞懸液與轉入物(如 DNA、RNA)置于比色杯內,插入 ShockPod 插槽,確保方向正確。手冊提醒“電擊杯只能以正確方向插入”。
按下“Pulse”鍵或啟動按鈕,系統將對電容器充電,并在設定時刻釋放電脈沖至樣品。若出現電弧、氣泡或異常應停止操作并檢查樣品狀態。
脈沖結束后,屏幕會顯示實際電壓、時間常數、波形類型等運行結果(如成功發射、是否有放電異常等)。
立即將樣品從電擊杯轉移至預熱或回恢復培養基中,利于細胞膜修復和外源分子表達。
將樣品放入適宜溫度的孵育條件中(例如哺乳動物細胞 37 °C CO? 培養箱)。
若為細菌或酵母,可立即進行培養復蘇。
記錄實驗參數與轉染效果,以便優化和重復實驗。
關閉設備電源,清理電擊杯、更換或沖洗用過的杯體,保持設備整潔。
正確的樣品準備是獲得高轉化效率的關鍵。以下為建議流程與注意事項:
使用 0.1 cm 間隙電擊杯:適合細菌或酵母,高電場強度、體積小。
使用 0.2 cm 或 0.4 cm 間隙電擊杯:適合哺乳動物細胞或原生質體,體積相對較大,電場強度適中。
比色杯要保持無裂痕、清潔、無氣泡、無殘液影響。
樣品應懸浮在低離子強度緩沖液中,避免高導電介質(如 PBS、LB)直接使用,因為高導電性會降低電場強度并增加電弧風險。
懸液宜預冷至4 °C以降低熱損傷并提高轉化效率。
懸液體積應適當(如 50–100 μL),杯體中不要出現氣泡。
細胞應處于對數生長期(生長活躍)。
洗滌后細胞應懸浮于適宜緩沖液中,去除培養液及殘留離子。
懸液濃度可根據細胞類型而定,如常見為 ~10? cells/mL。
操作前盡量保持細胞于冰上、減少環境刺激。
外源分子量、濃度應符合典型轉染條件。
避免在懸液中含有大量雜質或己降解物。
若為哺乳動物細胞轉染大質粒、siRNA 或蛋白,建議縮短脈沖時間或調整電壓,以減少細胞死亡。
下面以哺乳動物細胞(如 293T、CHO)電穿孔為例,說明完整實驗流程:
細胞處于對數生長期,收集、離心、洗滌兩次以去除培養基和離子殘余。
將細胞懸浮在低離子緩沖液(預冷 4 °C)中,調整濃度如 1 × 10? – 5 × 10? cells/mL。
準備外源 DNA(如 2–10 μg)或 RNA/蛋白,混合入細胞懸液中,輕輕混勻、避免氣泡。
選用 0.4 cm 間隙電擊杯,加入例如 100 μL混合液,輕輕抖動排氣泡,插入 ShockPod。
在儀器上選擇“預設程序”中哺乳動物細胞對應選項,或手動輸入電壓如 1,200 V、方波模式、脈沖時間例如 10 ms、1 脈沖、間隔不適用(單次脈沖)。
按“Pulse”鍵開始操作。注意觀察是否有電弧、是否有異常提示。
脈沖結束后,立即將細胞轉移至含復蘇培養基、溫暖至 37 °C 的 CO? 孵育箱中。
24 小時后更換培養基,48–72 小時后評估轉染效率(如熒光蛋白表達、抗性篩選、生存率)。
記錄所使用參數及結果,為下次實驗優化提供依據。
通過實踐,用戶可逐步調整電壓、電容或脈沖數以兼顧轉染效率與細胞存活率。
操作高壓電穿孔設備需嚴格遵守安全規程,減少風險。以下為關鍵注意事項:
操作時務必佩戴絕緣手套、護目鏡、穿實驗室防護服。
不可在設備通電狀態下觸摸裸露電極或插入液體。
電擊杯插入前,必須關閉 ShockPod 蓋,并確認上蓋關閉良好。
若發現比色杯有裂痕、液體有氣泡、樣品混濁,應立即終止操作。
操作平臺應保持干燥,遠離水源或易導電液體。
不得頻繁連續觸發脈沖,應給設備適當冷卻時間,避免充放電過熱。
若出現電弧或誤觸,按下“Discharge”鍵或斷電處理。
操作環境應滿足工作溫度(0–35 °C)且無冷凝濕氣。
為了保證設備長期可靠運行,應進行定期維護:
使用 70% 乙醇擦拭外殼、電極連接線、ShockPod 表面。
不得使用丙酮、苯等有機溶劑清洗電極或主機面板。
清理樣品殘液、霧狀液體或污染物,避免導致導電短路。
存放于干燥、通風、無腐蝕氣體、無陽光直射環境。
長期停用前應斷電、清潔、蓋防塵罩、拔出電源。
建議每月檢查模塊連接、電極磨損、電穿孔杯使用次數。
建議每月至少用標準電阻/比色杯檢查輸出電壓及時間常數。
建議每季度檢查模塊功能、電容值穩定性、是否有電弧保護問題。
若設備提示錯誤,應聯系廠家或授權服務商進行維修(但根據開頭聲明“質保3年只換不修”)。
記錄設備的使用情況、維修記錄、實驗參數,為質量控制與溯源提供依據。
以下列出常見問題、原因分析與解決方法:
| 問題 | 可能原因 | 解決方案 |
|---|---|---|
| 無電壓輸出 | 電源未接通;保險絲燒毀;模塊未連接 | 檢查電源、模塊插口、保險絲,確保連接正確 |
| 出現電弧 / 放電異常 | 液體有氣泡;比色杯間隙過大;樣品導電性過強 | 排除氣泡、換用合適杯隙(如0.1 cm用于細菌)、降低導電性或體積 |
| 轉染效率低 | 參數不適合;細胞狀態差;DNA/混合物質量低 | 優化電壓/脈沖時間;使用對數期細胞;提高樣品純度 |
| 屏幕凍結或死機 | 靜電干擾;模塊連接不良;系統出錯 | 斷電重啟;檢查模塊連接;如仍無效送修服務 |
| 電壓偏低 / 時間常數偏差大 | 電容老化;樣品電阻異常;模塊故障 | 檢查電容模塊;測量樣品阻抗;更換模塊或聯系廠家 |
如發生嚴重硬件故障,應聯系設備供應商或廠家進行處理。鑒于本設備由廠家提供質保3年只換不修政策(開頭所述),建議在保證期內如出現硬件故障,即聯系廠方更換。
為了獲得更優的轉染效率和更高的細胞存活率,以下為一些建議:
使用 0.1 cm 間隙電擊杯 時可顯著提高電場強度,適用于細菌、酵母等高效轉化。
對于哺乳動物細胞,建議先使用低電壓、短脈沖時間方案,再根據存活率和表達率逐步提升電壓。
若使用線性 DNA、siRNA 或蛋白質轉染,可縮短脈沖持續時間以減少因較高電壓造成的細胞熱損傷。
轉染后立即置于 37 °C 孵育有助于細胞膜快速修復,從而提高表達效率。
每次實驗記錄詳細參數(電壓、電容/時間常數、脈沖數、間隔、杯隙、細胞濃度、緩沖液類型)以便優化。
分批操作大體積樣品,有助于熱量散失與電場均勻,提高整體效率。
定期檢查樣品溫度、電擊杯狀態(無裂痕、無殘液、無氣泡)以及電極連接線是否磨損。
本型號165-2660 “伯樂電穿孔儀”是一款適用于科研實驗室、支持廣泛細胞類型的高性能電穿孔系統。其模塊化設計、豐富參數設定、預設程序與手動靈活調整能力,使其在細菌、酵母、植系細胞、哺乳動物細胞等多領域應用成為得力工具。通過規范操作、細胞良好狀態、合適的緩沖液和杯隙選擇、合理參數設定與維護保養,用戶可獲得高效、穩定的轉染效果。設備若在質保期內出現硬件故障,可依據“質保3年只換不修”政策進行更換,從而降低維修成本、提高實驗保障。
建議用戶在首次使用前熟讀完整用戶手冊,嚴格遵守安全操作規范及維護建議,以延長設備壽命、保障實驗安全、提升數據可信度。
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