質(zhì)保3年只換不修,廠家長(zhǎng)沙實(shí)了個(gè)驗(yàn)儀器制造有限公司。
一、概述與適用對(duì)象
伯樂(lè)電穿孔1652100是一款面向微生物與基礎(chǔ)分子克隆實(shí)驗(yàn)的臺(tái)式電穿孔設(shè)備,特點(diǎn)是結(jié)構(gòu)緊湊、操作簡(jiǎn)潔、參數(shù)調(diào)用迅速、重復(fù)性好。更適合細(xì)菌與酵母等微生物的質(zhì)粒轉(zhuǎn)化、線性DNA導(dǎo)入、標(biāo)記染料或小分子進(jìn)入等場(chǎng)景。本文提供一份從準(zhǔn)備到收尾的完整操作步驟與配套表格建議,幫助新手快速掌握、老手穩(wěn)定發(fā)揮。
二、上機(jī)前準(zhǔn)備(環(huán)境與物料)
實(shí)驗(yàn)環(huán)境
臺(tái)面干燥、整潔,遠(yuǎn)離明水與強(qiáng)腐蝕性試劑。
佩戴護(hù)目鏡、絕緣手套、實(shí)驗(yàn)服。
預(yù)留穩(wěn)定電源插座,避免與大功率設(shè)備共插一排造成電壓波動(dòng)。
設(shè)備與耗材
1652100主機(jī)、電極連接線、電擊杯架。
電穿孔比色杯(0.1 cm與0.2 cm常用,原裝或同規(guī)格兼容一次性杯)。
細(xì)胞電穿孔緩沖液(低離子強(qiáng)度),無(wú)菌離心管。
質(zhì)粒或線性DNA/環(huán)狀DNA、RNA或其他待導(dǎo)入分子。
復(fù)蘇培養(yǎng)基、培養(yǎng)皿或選擇性平板。
溫控與預(yù)處理
比色杯置冰上或4℃冷藏預(yù)冷30分鐘以上。
緩沖液與細(xì)胞懸液同溫,減少溫差應(yīng)激。
復(fù)蘇培養(yǎng)基預(yù)溫至適宜溫度(如37℃)。
三、樣本制備(細(xì)胞與核酸)
細(xì)胞狀態(tài)
細(xì)菌或酵母處于對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期,活力高,細(xì)胞壁/膜完整。
充分去除高鹽培養(yǎng)基:離心收集后以去離子水或低離子電穿孔緩沖液洗滌2–3次。
細(xì)胞濃度
細(xì)菌:常見(jiàn)范圍約1×10? cells/mL;酵母可略低。根據(jù)經(jīng)驗(yàn)與后續(xù)轉(zhuǎn)化效率微調(diào)。
核酸樣品
質(zhì)粒純度高、無(wú)鹽離子殘留、無(wú)內(nèi)毒素干擾;濃度與總量按菌株經(jīng)驗(yàn)值配置。
混合前輕柔操作,避免劇烈吹打產(chǎn)生氣泡。
四、裝杯與體積建議
選擇杯隙
0.1 cm杯:電場(chǎng)強(qiáng),常用于細(xì)菌小體積高效率轉(zhuǎn)化。
0.2 cm杯:電場(chǎng)較緩,適合對(duì)電擊較敏感的微生物或需要稍大體積的樣本。
上樣體積
0.1 cm杯建議40–60 μL;0.2 cm杯建議50–100 μL。保持液面平整,避免氣泡。
操作要點(diǎn)
預(yù)冷后的杯體從冰上取下,迅速加入細(xì)胞與核酸混合液,輕彈底部排泡。
擦拭杯外壁,確保干燥再插入杯槽,防止表面導(dǎo)電造成電弧。
五、設(shè)備開(kāi)機(jī)與自檢
接通電源并開(kāi)機(jī),觀察屏幕與指示燈是否正常。
檢查電極線連接穩(wěn)固、杯架清潔、杯槽內(nèi)無(wú)異物與水漬。
空載自檢:無(wú)需插杯,執(zhí)行待機(jī)檢測(cè),確認(rèn)主機(jī)無(wú)報(bào)警信息。
六、程序選擇與參數(shù)設(shè)定
預(yù)設(shè)程序
1652100為微生物優(yōu)化過(guò)的預(yù)設(shè)檔,適合大腸桿菌、酵母等常見(jiàn)對(duì)象。選擇對(duì)應(yīng)程序可快速獲得可重復(fù)結(jié)果。
手動(dòng)參數(shù)
需要微調(diào)時(shí),可根據(jù)菌株、杯隙、緩沖與體積調(diào)整電壓與脈沖時(shí)間常數(shù)目標(biāo)區(qū)間。
原則:新菌株先保守,優(yōu)先保障存活率,再逐步提高電場(chǎng)強(qiáng)度。
記錄表
在操作前于記錄表寫明:日期、菌株/細(xì)胞、杯隙、體積、核酸量、所用程序或參數(shù)、操作者簽名。
七、施加脈沖的標(biāo)準(zhǔn)步驟
插杯
將裝有樣本的電擊杯沿正確方向插入杯槽,壓緊就位。確保杯壁干燥、無(wú)液體外溢。
安全確認(rèn)
蓋好防護(hù)蓋或放下杯架護(hù)罩,確認(rèn)周圍人員知悉將施加高壓。
觸發(fā)脈沖
按下觸發(fā)鍵。過(guò)程中不要觸碰杯體與電極。
讀取反饋
脈沖結(jié)束后,屏幕會(huì)顯示關(guān)鍵反饋值(如電壓讀數(shù)、時(shí)間常數(shù))。及時(shí)記錄。
取杯轉(zhuǎn)移
迅速取出杯體,用無(wú)菌移液器將樣本移入復(fù)蘇培養(yǎng)基或目標(biāo)體系。對(duì)細(xì)菌,可立即37℃振蕩復(fù)蘇;對(duì)酵母,按相應(yīng)條件溫育。
八、脈沖后處理與復(fù)蘇
細(xì)菌樣本
通常復(fù)蘇30–60分鐘后涂布對(duì)應(yīng)抗性平板,倒置培養(yǎng)。
酵母樣本
復(fù)蘇時(shí)間可適當(dāng)延長(zhǎng),視菌株耐受情況而定。
注意事項(xiàng)
復(fù)蘇期間輕柔混勻,避免剪切損傷。
需要時(shí)設(shè)置空白對(duì)照與化學(xué)法對(duì)照,用于評(píng)估電穿孔優(yōu)勢(shì)與背景。
九、培養(yǎng)、計(jì)數(shù)與效率評(píng)估
平板培養(yǎng)
選擇性培養(yǎng)基、適宜溫度與時(shí)間。
計(jì)數(shù)與記錄
統(tǒng)計(jì)菌落數(shù)或篩到的陽(yáng)性克隆數(shù),記錄至操作表。
計(jì)算與比較
換算轉(zhuǎn)化效率并與以往參數(shù)、不同杯隙、不同體積進(jìn)行縱向?qū)Ρ龋纬蓪?shí)驗(yàn)室自有經(jīng)驗(yàn)曲線。
十、安全要點(diǎn)與風(fēng)險(xiǎn)控制
防電弧
杯外壁干燥、無(wú)鹽液殘留、無(wú)氣泡。
體積不過(guò)量,避免液面上翻觸及杯蓋內(nèi)壁。
防觸電
施加脈沖時(shí)手離開(kāi)杯體與電極,嚴(yán)禁開(kāi)啟保護(hù)罩。
防過(guò)熱
連續(xù)多次脈沖需間隔,讓設(shè)備電容與電源模塊散熱,延長(zhǎng)壽命。
生物安全
對(duì)轉(zhuǎn)化物、質(zhì)粒與菌株進(jìn)行合規(guī)標(biāo)識(shí)與分類管理,廢棄物按規(guī)程處置。
十一、常見(jiàn)問(wèn)題與快速排查
電弧或報(bào)警
可能因杯外壁潮濕、樣本導(dǎo)電性過(guò)強(qiáng)、杯內(nèi)有氣泡。解決:擦干杯體、更換低離子緩沖、重新上樣排泡、適度減少體積。
轉(zhuǎn)化效率低
可能因細(xì)胞狀態(tài)差、DNA純度不足、參數(shù)偏保守或過(guò)激。解決:用對(duì)數(shù)期細(xì)胞、提升DNA質(zhì)量、逐步優(yōu)化電壓與杯隙、縮短或微調(diào)脈沖目標(biāo)。
無(wú)菌落或全部陰性
排查選擇性壓力是否過(guò)強(qiáng)、平板是否失效、復(fù)蘇是否充分、DNA是否降解。
屏幕無(wú)顯示或鍵無(wú)響應(yīng)
檢查電源、保險(xiǎn)絲與連接線;斷電靜置后重啟。若重復(fù)出現(xiàn),停止使用并聯(lián)系售后更換。
時(shí)間常數(shù)異常飄忽
多與導(dǎo)電性、杯隙與體積有關(guān),重新制備樣本,記錄對(duì)照以確認(rèn)問(wèn)題在樣本或耗材而非設(shè)備。
十二、參數(shù)優(yōu)化的實(shí)務(wù)路徑
單變量法
在固定菌株與緩沖條件下,僅改變電壓或杯隙,觀察效率與存活率變化。
體積與濃度
同步考察樣本體積與細(xì)胞密度,對(duì)電場(chǎng)均勻性與熱效應(yīng)影響顯著。
復(fù)蘇條件
不同菌株對(duì)復(fù)蘇時(shí)間與溫度敏感度不同,設(shè)置2–3檔并行評(píng)估。
統(tǒng)計(jì)與沉淀
連續(xù)3–5批次取均值,更能反映參數(shù)真趨勢(shì)。把“好用”的參數(shù)固化為實(shí)驗(yàn)室SOP版本號(hào),便于新成員直接采用。
十三、維護(hù)保養(yǎng)與周期檢查
日常清潔
斷電狀態(tài)下,用70%酒精擦拭外殼與杯槽表面,嚴(yán)禁強(qiáng)溶劑。
電極與杯槽
定期觀察有無(wú)氧化、積塵或液體滲漏痕跡,若有異常立即停機(jī)處理。
散熱與間歇
高頻使用安排合理間隔,避免過(guò)熱。
記錄與追蹤
建立設(shè)備臺(tái)賬:使用日期、累計(jì)次數(shù)、異常事件、維護(hù)時(shí)間節(jié)點(diǎn)。
校核建議
每月進(jìn)行一次輸出一致性核查(對(duì)比歷史反饋值),每季度做一次全面狀態(tài)巡檢。
十四、規(guī)范化文檔與可追溯管理
標(biāo)準(zhǔn)操作卡(建議貼在設(shè)備旁)
準(zhǔn)備清單 → 安全檢查 → 選杯裝樣 → 設(shè)定程序 → 脈沖 → 復(fù)蘇 → 培養(yǎng) → 記錄。
記錄表核心字段
日期、操作者、菌株/細(xì)胞、杯隙與體積、緩沖類型、DNA信息、程序/參數(shù)、脈沖反饋值、復(fù)蘇與培養(yǎng)條件、結(jié)果與備注。
版本管理
SOP標(biāo)注版本號(hào)與生效日期,變更要點(diǎn)以“修訂記錄”形式留痕。
十五、完整操作示例(范式)
準(zhǔn)備階段
預(yù)冷0.1 cm杯與緩沖液,離心收集對(duì)數(shù)期細(xì)胞并低離子洗滌,調(diào)至目標(biāo)濃度。
配好高純度質(zhì)粒,核酸總量按經(jīng)驗(yàn)范圍配置。
裝杯
取40–60 μL細(xì)胞核酸混合液入預(yù)冷杯,輕彈排泡,擦干外壁。
設(shè)定
選擇對(duì)應(yīng)該菌株的預(yù)設(shè)程序;首次嘗試使用保守檔位。
脈沖
插杯、合上護(hù)罩,觸發(fā)脈沖;記錄反饋值。
轉(zhuǎn)移與復(fù)蘇
立即轉(zhuǎn)入預(yù)溫復(fù)蘇液,輕柔混勻,振蕩培養(yǎng)至30–60分鐘。
上板與培養(yǎng)
涂布選擇平板或接種液體培養(yǎng),標(biāo)記清楚,按溫度與時(shí)間培養(yǎng)。
評(píng)估
計(jì)數(shù)菌落或檢測(cè)陽(yáng)性克隆,計(jì)算效率,填寫記錄表,與歷史參數(shù)比對(duì)。
收尾
斷電、清潔、歸還耗材,更新臺(tái)賬與SOP優(yōu)化建議。
十六、質(zhì)量與結(jié)果提升的關(guān)鍵細(xì)節(jié)
核酸純度與緩沖離子強(qiáng)度是效率與電弧發(fā)生的決定因素。
杯隙與體積影響電場(chǎng)強(qiáng)度與均勻性,先從小體積與較小杯隙切入更穩(wěn)妥。
冰上操作減少熱損傷,但復(fù)蘇應(yīng)迅速過(guò)渡到最適溫度。
通過(guò)空白對(duì)照、化學(xué)法對(duì)照建立參照坐標(biāo),客觀評(píng)估電穿孔收益。
定期回顧“失敗樣本”并歸因,形成內(nèi)部FAQ庫(kù)。
十七、設(shè)備故障處理與質(zhì)保對(duì)接
若遇到無(wú)法自排的故障(反復(fù)報(bào)警、無(wú)顯示、反饋值異常且與樣本無(wú)關(guān)),立即停止使用,拍照留存界面信息與操作環(huán)境,記錄日期與批次。
在質(zhì)保期內(nèi)按“只換不修”的方式對(duì)接更換,保留發(fā)票、序列號(hào)、問(wèn)題描述與排查步驟。
更換后進(jìn)行一次基線測(cè)試,確認(rèn)新設(shè)備輸出一致、反饋穩(wěn)定,再恢復(fù)常規(guī)實(shí)驗(yàn)。
十八、結(jié)語(yǔ)
1652100在微生物電轉(zhuǎn)化中的優(yōu)勢(shì)體現(xiàn)在操作友好、參數(shù)可復(fù)制、效率提升、維護(hù)輕量。遵循以上操作步驟與記錄規(guī)范,能顯著降低新手學(xué)習(xí)曲線,提升批次穩(wěn)定性與成功率。把安全與質(zhì)量控制前移,把優(yōu)化與復(fù)盤固化為SOP的日常部分,實(shí)驗(yàn)室即可建立起可靠的電穿孔工作流,在保障人員與設(shè)備安全的前提下,持續(xù)輸出穩(wěn)定、可驗(yàn)證的結(jié)果。
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